动物细胞培养中常用的液体有平衡盐溶液、消化液、pH调整液、抗菌素液、谷氨酰胺、肝素钠、蛋白酶抑制剂、培养基等。这些液体在配制时有如下要求：使用高纯化的三蒸水；按照用液的配方计算各成分的用量，然后准确称取，并按规定顺序溶于三蒸水中；保证各组分完全溶解；pH值测定和调整；消毒灭菌分装小瓶，抽样做无菌实验；配制细胞用液器材的清洁要求同细胞培养器材。那么细胞培养用液的分装方法与要求有哪些呢？
1.实验器材的使用方法
为防止消毒物品的再污染，实验器材必须无菌操作。细胞用液瓶的打开、吸液、关闭等一切操作都要在超净台安全区进行。
（1）盐水瓶瓶塞的使用
上塞：瓶口消毒，右手拇指、食指塞进胶皮内，将塞旋入消毒瓶口内。瓶口再消毒，瓶直立火焰前方。双手概指、中指固定瓶位双手食指将胶皮外翻。最后用消毒纸包装。
去塞：瓶口消毒后，用消毒镊挑开胶皮。瓶口再消毒，胶塞旋松取出，瓶顺风斜放45℃支架。
（2）青霉素瓶瓶塞的使用
用消毒的台镊取放瓶塞，注意瓶口火焰消毒。贮液瓶塞盖好，封口膜或胶布密封。
（3）吸管的使用
取管：右手松夹筒盖，左手水平抖动管筒，管头端暴露时取管，筒口消毒套盖。吸管套吸头后，火焰上方来回3次待用。
注意：粗口径吸管套前，吸头先用湿酒精棉球沾湿；饭盒存放的吸管，使用时将盒盖开一角，用火焰消毒的台镊将遮布掀起一角，吸管头端暴露，台镊再火焰消毒，将吸管取出，遮布复原,盒盖好。
（4）注射器的使用
安装：针栓、针筒消毒后在安全区套好。台镊消毒将针头固定，字面在上。针头放人消毒管内待用。
使用：瓶口消毒去塞，直立火焰前方，针头插入液面下，左手拿针筒，右手提针栓，缓慢吸出液体。排气和多余液体推入酒精棉球内。
（5）瓶管、盖的使用
盖的使用要求同塞。需使用同一盖时，盖使用面放在酒精棉球上。套盖前，盖使用面火焰消毒。
2.无菌滤液分装
（1）使用正压滤器时，采用边过滤边分装的方法。瓶口的液滴先用微湿酒精棉球吸液，再用干酒精棉球由里向外擦拭，最后，火焰消毒，加塞包装。
（2）使用负压滤器时，借助消毒吸管，将液体移人分装瓶内，瓶口液滴擦拭方法同（1）。
（3）血清﹑酶液少量无菌液体用吸管分装，分装时注意多换吸管。
3.细胞用液的分装要求
（1）根据配量准备分装瓶和塞。分装瓶规格，数量应根据实验需要准备，这与每次、每周实验用量、试剂稳定性等有关。避免包装瓶过大、贮液时间过长或细胞用液反复冻融使用，造成营养成分损失和微生物污染。按一周用量挑选小包装瓶。融化后的液体置4℃保存。
（2）实验前，做好无菌室，超净台的清洁、消毒工作。实验用品清点入台，超净台启动，紫外线消毒40 min。实验试剂恢复室温后，瓶口，瓶外壁酒精消毒入台。台面酒精消毒，点火，台镊消毒入酒精瓶。这样做好了实验准备。
（3）分装前，做好各瓶贮液量标记，瓶液量要小于瓶容积的2/3。牛血清等融化后摇匀
方法是：左手掌心托瓶，右手拿瓶口顺时针方向轻轻转动液体，避免用力过猛而使液体沾染瓶口和塞。
（4）抽滤分装时，尽量减少无菌室开门次数和非操作人员进入。严格无菌操作，尽量缩短试剂在空气中暴露的时间。
（5）比较各分装瓶液体的颜色。将液体颜色过浅的瓶弃去，此现象与瓶泡酸后冲洗不净有关（瓶内残留酸性物质）。分装多瓶时，最后几瓶可能出现颜色加深的现象，这是因为瓶口敞开时间过长，液体CO2逃逸，pH值上升的缘故。颜色过深的液体用醋酸调节后使用。
（6）各试剂瓶标记名称、浓度、配制日期、组号。
（7）抽样（开始、中间、最后瓶）做无菌试验，37℃培养3天。